La formación de biopelículas y la calidad del agua en la consulta odontológica
Biofilm formation and water quality in the dental practice
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Objetivo. Recuperar y analizar la presencia de bacterias formadoras de biopelículas en las mangueras de la jeringa triple y de la pieza de mano que distribuyen el agua a las unidades dentales de la Fundación Universitaria San Martin. Método. Se realizó un estudio descriptivo de corte transversal con muestreo probabilístico. Se estudiaron las bacterias presentes en el agua recolectada en la jeringa triple y la pieza de mano, las cuales fueron seleccionadas al ser los instrumentos por los cuales transita el agua que entrará en contacto con el paciente. Se tomaron muestras antes y después de la consulta, de la jeringa triple con solo agua, con agua–aire y la pieza de mano. Se realizaron cultivos por filtración por membrana en medios Endo, Cetrimide y Sangre Azida. Resultados. Se encontraron 84 % de muestras positivas para cocos Gram positivos, mientras que el 8 % de las muestras presentaban aislamientos de bacilos Gram negativos, representado en E coli y P aeruginosa. La flora Gram positiva estuvo representada por Staphylococcus hominis y Staphylococcus epidermidis.
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1. Castillo C. Presencia de Biofilm en el sistema de transporte de agua interno de las unidades dentales. [Trabajo de grado]. Guatemala; 2003..
2. Bartram J, and others. Heterotrophic plate counts and drin- king-water safety: the significance of HPCs for water quali- ty and human health. Revista World Health Organization. 2003.
3. Li J, Helmerhorst E, Leone C, Troxler R, Yaskell T, Haffajee A, Socransky S, Oppenheim P. Identification of early micro- bial colonizers in human dental biofilm. Revista Journal of Applied Microbiology. 2004; 97: 1311–1318.
4. Lasa I, Pozo L, Penadés R, Leiva J. Biofilms bacterianos e infección. Universidad pública de Navarra.
5. Jose C, Orgaz B. Las biopelículas microbianas, un búnker de uso habitual. Madrid; 2009. 129-145 p.
6. Coleman D, O’Donnell M, Boyle M, Russell R. Microbial biofilm control with in the dental clinic: reducing multiple risks. Journal of Infection Prevention. 2010; 11: 192-198.
7. Tyagi S, Kulkarni P, Prasad K. Science Regarding Dental Unit Waterlines (Duwl): A Review. Añas and Essences of Dentistry. 2010; 2: 108-113.
8. Nazar J. Biofilms bacterianos. Revista otorrinolaringología. 2007; 67: 61-72.
9. Uzcudun I. Biofilms Bacterianos. Universidad Pública de Navarra.
10. Hinsa S, Espinosa U, Ramos J and others. Transition from reversible to irreversible attachment during biofilm forma- tion by Pseudomonas fluorescens WCS365 requires an ABC transporter and a large secreted protein. Revista pubimed. 2003; 49: 905-18.
11. Kjelleberg S, Givskov M. The Biofilm Mode of Life: Mecha- nisms and Adaptations. British Library Cataloguing Horizon bioscience; 2007.
12. Koval C, Gayman T, Kinsey A, Walsh A. Quorum Sensing in Pseudomonas aeruginosa; 2008.
13. Carmen Pedroza. Caracterización de la enzima acil homose- rina lactonasa de una cepa de Bacillus thuringiensis. [Trabajo de grado]. Medellín; 2010.
14. Gómez C, Leal A, Pérez M, Navarrete M. Mecanismos de resistencia en Pseudomonas aeruginosa: Entendiendo a un peligroso enemigo. 2005; 53.
15. Yáñez M, Barberá V, Catalán V. Control de la contaminación microbiológica en unidades dentales. Gaceta Dental. 2005; 160: 54-60.
16. Moreno.M, Ruiz.E. Staphylococcus epidermidis formador de biofilm en blefaro conjuntivitis. Revista médica del Hos- pital General de México. 2007; 70 (1): 24 - 29.
17. Heilmann. C, Schweitzer. O, Gerke. C, Vanittanakom. N, Mack. D, Götz. F. Molecular basis of intercellular adhesion in the biofilm-forming Staphylococcus epidermidis; 2007.
18. Rivera. J, Zabala I. Caracterización fenotípica y genotípica de cepas de Staphylococcus sp. productoras de biofilm ais- ladas de quesos. [Trabajo de grado]. Maracaibo: Universidad del Zulia. Facultad Experimental de Ciencias; 2009.
19. Seija.V. Etiopatogenia microbiológica. Bacteriología y viro- logía médica. 2009.
20. Arraigada A, Larrucea C, Padilla C. Control de Infección en los Ductos de Equipos Dentales de las Clínicas Odontoló- gicas de la Universidad de Talca. Revista Dental de Chile. 2004; 95(2): 3-9.
21. Muñoz J, Hernández D, Moreno A. Calidad bacteriológica del agua de una clínica odontológica rural de la facultad de odontología de la universidad Autónoma de Zacatecas. Re- vista de la Asociación Dental Mexicana. 2002; 2: 52-59.
22. Chacón Ch, Isvelia M, Yepez G y otros. Aislamiento de es- pecies de Pseudomonas de las líneas de agua de las unidades odontológicas. Acta odontológica venezolana. 2010; 48:1-8.
23. Lancellotti M, Pereira M, De Ávila F. Research on staphylo- coccus spp in biofilm formation in water pipes and sensibi- lity to antibiotics. Brazilian Journal of Oral Sciences. 2007; 6(20): 1283 - 1288.
24. Pinilla B Gladys, Chavarro P Bibiana, Moreno A Natalia, Navarrete O Jeannette, Muñoz M Liliana. Determinación de los genes, 16S ADNr, polA, y TpN47, en la detección de Treponema pallidum subsp. pallidum para el diagnóstico de sífilis congénita. Nova. 2015; 13( 24 ): 17-25.
25. Corrales Lucia Constanza, Antolinez Romero Diana Mar- cela, Bohórquez Macías Johanna Azucena, Corredor Vargas Aura Marcela. Bacterias anaerobias: procesos que realizan y contribuyen a la sostenibilidad de la vida en el planeta. Nova. 2015; 13( 24 ): 55-81.
26. Carrero Sandra Helena Suescún, HerediaMontoya Dina Pao- la, Bolaños Yoryany Mulato, Medellín Martín Orlando Puli- do. Seroprevalencia de infección por Leptospira y factores de riesgo en estudiantes de una universidad de Colombia. Nova. 2017; 15( 27 ): 131-138.
27. Zuluaga Martha, Robledo Sebastian, Osorio-Zuluaga Ger- man A, Yathe Laura, Gonzalez Diana, Taborda Gonzalo. Me- tabolomics and pesticides: systematic literature review using graph theory for analysis of references. Nova. 2016; 14( 25 ): 121-138.
28. Ávila de Navia Sara Lilia, Estupiñán-Torres Sandra Móni- ca, Díaz González Liliana. Calidad bacteriológica del agua Vereda El Charco, San Miguel de Sema, Boyacá- Colombia. Nova. 2016; 14( 25 ): 139-145.