Evaluación de la actividad celulolítica y quitinolítica de hongos filamentosos aislados de rizósfera de cultivos de papa para control de rhizoctonia solani

Evaluation of the cellulolytic and chitinolytic activity of rhizosphere isolated filamentous fungi from potato cultures to control rhizoctonia solani

Objetivo. Evaluar la actividad celulolítica y quitinolítica de los hongos aislados de rizósfera de papa con posibilidades de ser usados para el control biológico de R. solani. Método. Se aislaron y clasificaron los hongos, mediante sus características macroscópicas y microscópicas. Se aplicaron pruebas para evaluar la capacidad celulolítica y quitinolítica de los hongos y se probó su capacidad antagónica frente al fitopatógeno. Se realizó análisis fisicoquímico del suelo del cual se aislaron los hongos de estudio. Resultado. Del total de hongos caracterizados, solamente una cepa de Rhizopus sp determinada como TN8 fue la que presentó la mejor actividad antagónica frente a R. solani, lo cual, permite considerar este hongo como posible agente de biocontrol para el fitopatógeno de estudio.

1. REFERENCIAS
2. FEDEPAPA y Gobernación de Cundinamarca. Plagas y enfermedades de la papa [Internet]. 2010. Available from: http://jovenesrurales.minagricultura.gov.co/documents/10180/160303/Plagas+y+enfermedades+de+la+papa-Investigaci%C3%B-3n/0a3abf4d-a4db-4be2-ae50-d86db3c8d2ec;jsessionid=-716D53C76BD55622D15676D2C62230CB.worker1
3. Finagro. Sector papero se prepara para aumentar el consumo de papa en Colombia [Internet]. 2015. Available from: https://www.finagro.com.co/noticias/sector-papero-se-prepara-para-aumentar-el-consumo-de-papa-en-colombia
4. Quiroz-Castaneda RE, Balcazar-Lopez E, Dantan-Gonzalez E, Martinez a, Folch-Mallol J, Anaya CM. Characterization of cellulolytic activities of Bjerkandera adusta and Pycnoporus
5. sanguineus on solid wheat straw medium. Electron J Biotechnol. 2009;12(4):-.
6. Teather RM, Wood PJ. Use of Congo red-polysaccharide interactions in enumeration and characterization of cellulolytic bacteria from the bovine rumen. Appl Environ Microbiol.
7. ;43(4):777–80.
8. Rojas JA, Hormaza A. Evaluación del crecimiento y compatibilidad de hongos de la podredumbre blanca. Rev Cienc en Desarro. 2014;5(2):197–205.
9. Ulacio D, Salas J, Querales P, Sanabria ME. Microbiota del suelo de zonas produtoras de papa Del Estado Mérida Y Su Relación con Rhizoctonia solani. Bioagro. 2002;14(1):11–6.
10. Arias Cifuentes EL, Piñeros Espinosa PA. Aislamiento e identificacion de hongos filamentosos de muestras de suelo de los paramos de Guasca y Cruz verde. Vol. 1, Statewide Agricultural
11. Land Use Baseline 2015. PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA; 2008.
12. Mayea, Novo, Valiño. Introduccion a la microbiología del suelo. 1991;
13. Fernández L, Rojas N, Roldán T, Ramírez M, Zegarra H, Uribe R, et al. Manual de técnicas de análisis de suelos aplicadas a la remediación de sitios contaminados. México, D.F.: Instituto
14. Mexicano del Petróleo y el Instituto Nacional de Ecología; 2006. 19-89 p.
15. López Rivera R. Biodiversidad de la microbiota rizosferica de dos especies solanáceas : ( Solanum lycopersicon , L .) y Datura spp . ( tomate y toloache. Instituto Politecnico Nacional; 2011.
16. Vieira FCS, Nahas E. Comparison of microbial numbers in soils by using various culture media and temperatures. Microbiol Res. 2005;160(2):197–202.
17. Pérez C. Variación intraespecífica del hongo Conidiobolus coranatus y su relación endosimbiótica con la bacteria Pseudomonas sp. Colegio de Postgraduados; 2010.
18. Castelleti E. Poblaciones epífitas de Geotrichum candidum Link ex Pers. En postcosecha de duraznos y validación de un sistema de pronóstico temprano de la pudrición en post cosecha
19. de duraznos y validación de un sistema de pronóstico temprano de la pudrición ácida. 2010.
20. Enrique J, Latinoamericana T, Rodríguez-vázquez R, Luis R. Bacterias y hongos hidrocarbonoclastas de rizósfera de frijol y maiz en un suelo contaminado con petróleo Hydrocarbonoclastic Bacteria and Fungi of the Rhizosphere of Bean and Corn , in a Soil with Petroleum Pollution. Terra. 2003;
21. Saenz Rodriguez MN. Evaluacion del papel de los microorganismos lignoceluloliticos sobre los residuos vegetales en suelos rizosfericos de papa criolla Solanum phureja en municipios de Cundinamarca [Internet]. 2009. Available from: http://www.bdigital.unal.edu.co/8468/
22. Giraldo-Castrillón M, Torres-Gonzáles C, Díaz-Ortiz JE. Aislamiento de hongos celulolíticos causantes del biodeterioro de la Biblioteca Central de la Universidad del Valle (Cali-Colombia). Rev Mex Mic. 2009;29(April 2008):9–14.
23. Valencia M. Caracterización enzimática de cepas de Fusarium aisladas de lesiones de animales, humanos y plantas. 2009.
24. Manjares K, Piñeros Y, Rodriguez-Sandoval E. Evaluación del complejo enzimático producido mediante el cocultivo de Aspergillus sp. Y Trichoderma sp. en fase sólida sobre residuos de
25. palma. Bioagro. 2011;23(1):19–26.
26. Cruz N, Castellanos D, Arguello H. Degradation of cellulose and xylan by microorganisms isolated in two different compost from agricultural wastes in the Bogota Plateau. Rev Colomb Ciencias Hortícolas [Internet]. 2009;3(2):237–49. Available from: http://scholar.google.com/scholar?hl=en&btnG=Search&q=intitle:Degradaci?n+de+celulosa+y+xilano+por+microorganismos+aislados+de+dos+tipos+de+compost+de+residuos+agr?colas+en+la+Sabana+de+Bogot?#0
27. Escobar Escobar N, Mora Delgado J, Romero Jola NJ. Identificación De Poblaciones Microbianas En Compost De Residuos Orgánicos De Fincas Cafeteras De Cundinamarca. Boletín Científico Cent Museos Mus Hist Nat. 2012;16(1):75–88.
28. Jahangeer S, Khan N, Jahangeer S, Sohail M, Shahzad S, Ahmad A, et al. Screening and characterization of fungal cellulases isolated from the native environmental source. Pakistan J Bot. 2005;37(3):739–48.
29. Ishikawa F, Oishi K, Aida K. Chitin-binding hemagglutinin produced by Conidiobolus strains. Appl Environ Microbiol. 1979;37(6):1110–2.
30. Ishikawa F, Oishi K, Aida K. Chitinase Production by Conidiobolus lamprauges and Other Conidiobolus Species. Agric Biol Chem [Internet]. 2014;45(10):2361–2. Available from:
31. http://www.tandfonline.com/doi/full/10.1080/00021369.1981.10864888
32. Nuero O. Production of chitinase by Fusarium species. Curr Microbiol. 1995;30(5):287–9.
33. Mathivanan N, Kandasamy M, Kabilan V. Production of chitinase by Fusarium chlamydosporum, a mycoparasite to groundnut rust, Puccinia arachidis. Indian J Exp Biol.
34. ;35(8):890–3.
35. Patidar P, Agrawal D, Banerjee T, Patil S. Optimization of process parameters for chitinase production by soil isolates of Penicillium chrysogenum under solid substrate fermentation.
36. Process Biochem. 2005;40(9):2962–7.
37. Binoda P, Pusztahelyib T, Nagyc V, Sandhyaa C, Szakácsc G, Pócsib I, et al. Production and purification of extracellular chitinases from Penicillium aculeatum NRRL 2129 under solid-state fermentation. Enzyme Microb Technol. 2005;36(7):880–7.
38. Kavanagh K. Fungi biology and applications. 2005. 267 p.
39. Diemer M. Microclimatic Convergence of High-Elevation Tropical Páramo and Temperate-Zone Alpine Environments Title. J Veg Sci. 1996;6(821-830).
40. Tiessen H, Moir JO. Soil sampling and methods of analysis. In: Martin C, editor. Total and organic carbon. Canadian Society of Soil Science; 1993. p. 187–99.
41. Mala volta E, Paulo S. Relacion entre el fosforo y el zinc. Inf Agron. (63):12–3.
42. Perez CA, Rojas SJ, Montes V. D. Hongos formadores de micorrizas arbusculares: una alternativa biologica para la sostenibilidad de los agroecosistemas de praderas en el caribe colombiano. Rev Colomb Cienc Anim. 2011;3(2):366–85.
43. Da Silva López R. Patogenicidade de Paecilomyces farinosus sobre Coptotermes gestroi e parâmetros biológicos. Universidad Federal de Pernambuco Centro de Ciencias Biológicas.
44. Moreno Gonçalves AB. Aplicaciones biotecnológicas del gen “afp” (Antifungical Protein) de “Aspergillus giganteus” para la protección de plantas frente a infección por patógenos. Universitat de Barcelona; 2013.
45. Zhou X, Wang D-W, Zhang X, Wang J-H. The influence of the aphid-specific pathogen Conidiobolus obscurus (Entomophthoromycota: Entomophthorales) on the mortality
46. and fecundity of bamboo aphids. J For Res. 2014;19(Issue 4):388–94.
47. Witolda E. Characterization of proteo-, chitino- and lipolytic enzymes of parasitic fungus Conidiobolus coronatus. Wiad Parazytol. 2010;56:70–83.
48. Acero-Mondragón Edward Javier, Botero Rosas Daniel Alfonso, Maldonado Arango María Inés. Micosis por Pythium Insidiosum primer caso con diagnóstico definitivo en Colombia.
49. Nova [Internet]. 2013 Jan [cited 2017 Aug 02] ; 11(19 ): 65-72. Available from: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1794-24702013000100007&lng=en.
50. De Navia SLÁ, Torres SME. Calidad sanitaria del agua del Parque Natural Chicaque. Nova. 2013;11(20).
51. Rodríguez, O. E., Andrade, W. A., Díaz, F. E., & Moncada, B. Actividad antimicrobiana de líquenes de la cuenca alta del rio Bogotá. 2015; Nova, 13(23).
52. DOI: http://dx.doi.org/10.22490/24629448.2078